Extrato de Lentinula edodes no controle e na indução de resistência a patógenos do feijoeiro - DOI:10.5039/agraria.v14i4a6900

Anna Claudia Oliveira, Tainara Menegassi, Aline José Maia, Cacilda Márcia Duarte Rios Faria, Carla Garcia

Resumo


O feijoeiro (Phaseolus vulgaris L.) está entre as principais culturas da agricultura nacional e pode ser afetada por diversas doenças. Com o objetivo de desenvolver métodos de controle alternativos ao químico, verificou-se o potencial do extrato aquoso (EA) de Lentinula edodes no controle de doenças do feijoeiro e na indução de resistência pela ativação de enzimas de defesa, como peroxidase, catalase e polifenoloxidase, além de avaliar componentes de produção. O experimento em campo foi constituído pelos tratamentos com EA nas concentrações de 0, 5%, 10% ou 20%, acibenzolar-S-metil (ASM) e fungicida piraclostrobina como tratamentos padrões. O EA foi efetivo no controle da antracnose nas doses de 1% e 5%. A atividade de todas as enzimas avaliadas foi mais elevada as 12 e 24 horas após aplicação dos tratamentos, destacando-se a concentração de 20%. O EA nesta mesma dose aumentou o número de grãos por vagem e a produtividade. O extrato aquoso de L. edodes na concentração de 20% é efetivo na indução de resistência, aumentando os níveis enzimáticos e incrementando produtividade.

Palavras-chave


manejo alternativo; Colletotrichum lindemuthianum; Phaseolus vulgaris

Texto completo:

PDF (English)

Referências


Abbott, W.S. A method of computing the effectiveness of an insecticide. Journal of Economy Entomology, v. 18, n.2, p.265-267, 1925. https://doi.org/10.1093/jee/18.2.265a.

Albrecht, L. P.; Braccini, A. L.; Scapim, C. A.; Ávila, M. R., Albrecht, A. J. P. Biorregulador na composição química e na produtividade de grãos de soja. Revista Ciência Agronômica, v.43, n.4, p.774-782, 2012. https://doi.org/10.1590/S1806-66902012000400020.

Andreasson, E.; Marit, L.; Laith, M. Plant extracts comprising at least a phenolic compound, for inducing the natural defense of a planta against a pathogen, such as Phytophthora infestans. United States Patent, v.9, p.669-681, 2017. https://patents.google.com/patent/US9681669. 27 Mar.2019.

Bradford, M. M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry, v. 72, n.1-2, p. 248-254, 1976. https://doi.org/10.1016/0003-2697(76)90527-3.

Camejo, D.; Guzman-Cedeno, A.; Moreno, A. Reactive oxygen species, essential molecules, during plant–pathogen interactions. Plant Physiology and Biochemistry, v.103, p.10-23, 2016. https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2016.02.035.

Campbell, C.L.; Madden, L.V. (Eds.). Introduction to plant disease epidemiology. New York: Wiley, 1990. 532p.

Dalla Pria, M.; Amorim, L.; Bergamin Filho, A. Quantificação de componentes monocíclicos da mancha angular do feijoeiro. Fitopatologia Brasileira, v. 28, n.4, p. 394-400, 2003. https://doi.org/10.1590/S0100-41582003000400008.

Duangmal, K.; Apenten, R. K. O. A comparative study of polyphenoloxidases from taro (Colocasia esculenta) and potato (Solanum tuberosum var. Romano). Food Chemistry, v. 64, n.3, p. 351-359, 1999. https://doi.org/10.1016/S0308-8146(98)00127-7.

Ferreira, D. F. Sisvar: a computer statistical analysis system. Ciência e Agrotecnologia, v.35, n.6, p. 1039-1042, 2011. https://doi.org/10.1590/S1413-70542011000600001.

Garcia, C.; Faria, C. M. D. R.; Santa, H. S. D.; Botelho, R. V.; Maia, A. J. Antimicrobial activity of Agaricus brasiliensis on Plasmopara viticola and its effect on the induction of resistance to the control of downy mildew on ‘Isabel Precoce’. Arquivos do Instituto Biológico, v.85, e0052017, 2018. https://doi.org/10.1590/1808-1657000052017.

Godoy, C.V.; Carneiro, S.M.T.P.G.; Iamauti, M.T.; Dalla Pria, M.; Amorin, L.; Berger, R.D.; Bergamin Filho, A. Diagrammatic scales for bean diseases: development and validation. Journal of Plant Diseases and Protection, v. 104, n. 4, p. 336-345, 1997. https://pdfs.semanticscholar.org/525b/8b3e232bd5781f9b4f670c98e5f376779d2e.pdf. 29 Mar. 2019.

Kang, D. S.; Min, K. J.; Kwak, A. M.; Lee, S. Y.; Kang, H. W. Defense Response and suppression of Phytophthora blight disease of pepper by water extract from spent mushroom substrate of Lentinula edodes. The Plant Pathology Journal, v.33, n.3, p.264-275, 2017. https://doi.org/10.5423/PPJ.OA.02.2017.0030.

Kaur, H.; Nyochembeng, L. M.; Mentreddy, S. R.; Banerjee, P.; Cebert, E. Assessment of the antimicrobial activity of Lentinula edodes against Xanthomonas campestris pv. vesicatoria. Crop Protection, v.89, p.284-288, 2016. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2016.08.001.

Kijana, R.; Abang, M.; Edema, R.; Mukankusi, C.; Buruchara, R. Prevalence of angular leaf spot disease and sources of resistance in common bean in eastern democratic republic of Congo. African Crop Science Journal v.25, n.1, p.109-122, 2017. https://doi.org/10.4314/acsj.v25i1.8.

Kuhn, H.; Panstruga, R. Introduction to a virtual special issue on phytopathogen effector proteins. New Phytologist, v.202, n.3, p.727-730, 2014. https://doi.org/10.1111/nph.12804.

Kuhn, O. J.; Pascholati, S. F. Custo adaptativo da indução de resistência em feijoeiro mediada pela rizobactéria Bacillus cereus ou acibenzolar-S-metil: atividade de enzimas, síntese de fenóis e lignina e biomassa. Summa Phytopathologica, v.36, n.2, p.107-114, 2010. https://doi.org/10.1590/S0100-54052010000200001.

Lima, H.E.; Nechet, K.L.; Vieira, B.A.H.; Oliveira, J.R.; Duarte, H.S.S.; Queiroz, E.S.; Oliveira, F.L. Elaboração e validação de escalas diagramáticas para avaliação da severidade da mancha-bacteriana do feijão - caupi em cultivares com trifólios morfologicamente distintos. Ciência Rural, v. 43, n. 10, p.1735-1743, 2013. https://doi.org/10.1590/S0103-84782013001000001.

Lusso, M.; Pascholati, S. F. Activity and isoenzymatic pattern of soluble peroxidases in maize tissues after mechanical injury or fungal inoculation. Summa Phytopathologica, v. 25, n.3, p. 244-249, 1999.

Minibayeva, F.; Beckett, R. P.; Kranner, I. Roles of apoplastic peroxidases in plant response to wounding. Phytochemistry, v.112, p.122-129, 2015. https://doi.org/10.1016/j.phytochem.2014.06.008.

Owaid, M. N. Antagonistic role of hypha and cell-free culture filtrates of medicinal mushrooms to Verticillium sp. and Pythium sp. fungal pathogens. Current Research in Environmental and Applied Mycology, v. 7, n. 2, p. 94-102, 2017. https://doi.org/10.5943/cream/7/2/6.

Pereira, B. L.; Arf, O.; Santos, B. dos, N. C.; Oliveira, A. E.Z.; Kenji, K. L. Manejo da adubação na cultura do feijão em sistema de produção orgânico. Pesquisa Agropecuária Tropical, v.45, n.1, p.29-38, 2015. https://doi.org/10.1590/1983-40632015v4528018.

Piccinin, E.; Di Piero, R.M.; Pascholati, S.F. Cogumelo “shiitake” (Lentinula edodes) reduz o crescimento de fitopatógenos e a severidade de manchas foliares em sorgo. Summa Phytopathologica, v. 36, n. 1, p. 68-72, 2010. https://doi.org/10.1590/S0100-54052010000100012.

Ribeiro, T.; Azevedo, C. V. G.; Esteves, J. A. D. F.; Carbonell, S. A. M.; Ito, M. F.; Chiorato, A. F. Reaction of common bean lines to Xanthomonas axonopodis pv. phaseoli and Curtobacterium flaccumfaciens pv. flaccumfaciens. Crop Breeding and Applied Biotechnology, v.17, n.1, p.40-46, 2017. https://doi.org/10.1590/1984-70332017v17n1a6.

Ribeiro, T.; Esteves, J. A. D. F.; Silva, D. A.; Gonçalves, J. G. R.; Carbonell, S. A. M.; Chiorato, A. F. Classification of Colletotrichum lindemuthianum races in differential cultivars of common bean. Acta Scientiarum. Agronomy, v.38, n.2, p.179-184, 2016. https://doi.org/10.4025/actasciagron.v38i2.27866.

Sharma, S.; Khanna, P. K.; Kapoor, S. Optimised isolation of polysaccharides from Lentinula edodes strain NCBI JX915793 using response surface methodology and their antibacterial activities. Natural Product Research, v.30, n.5, p.616-621, 2016. https://doi.org/10.1080/14786419.2015.1030741.

Silva, R. F., Pascholati, S. F.; Bedendo, I. P. Indução de resistência em tomateiro por extratos aquosos de Lentinula edodes e Agaricus blazei contra Ralstonia solanacearum. Fitopatologia Brasileira, v. 32, n.3, p. 189-196. 2007. https://doi.org/10.1590/S0100-41582007000300002.

Silva, R. F.; Pascholati, S. F.; Bedendo, I. P. Indução de resistência em plantas de berinjela por Lentinula edodes e Agaricus blazei contra Ralstonia solanacearum: aspectos bioquímicos e biomassa vegetal. Summa Phytopathologica, v.34, n.2, p.137-144, 2008. https://doi.org/10.1590/S0100-54052008000200005.

Siqueira, I. T. D. D.; Cruz, L. R.; Souza-Motta, C. M. D.; Medeiros, E. V. D.; Moreira, K. A. Induction of acibenzolar-S-methyl resistance in cowpea to control anthracnose. Summa Phytopathologica, v.45, n.1, p.76-82, 2019. https://doi.org/10.1590/0100-5405/185029.

Stangarlin, J.R.; Kuhn, O.J.; Toledo, M.V.; Portz, R.L.; Schwan-Estrada, K.R.F.; Pascholati, S.F. A defesa vegetal contra fitopatógenos. Scientia Agrarias Paranaensis, v.10, n. 1, p. 18-46, 2011. https://doi.org/10.1818/sap.v10i1.5268.

Toillier, S. L.; Iurkiv, L.; Meinerz, C. C.; Baldo, M.; Viecelli, C. A.; Kuhn, O. J.; Schwan-Estrada, K. R. F.; Stangarlin, J. R. Controle de crestamento bacteriano comum (Xanthomonas axonopodis pv. phaseoli) e alterações bioquímicas em feijoeiro induzidas por Pycnoporus sanguineus. Arquivo Instituto Biológico, v.77, n.1, p.99-110, 2010. http://www.biologico.sp.gov.br/uploads/docs/arq/v77_1/toillier.pdf. 27 Mar. 2019.

Tománková, K.; Luhová, L.; Petøivalský, M.; Peè, P.; Lebeda, A. Biochemical aspects of reactive oxygen species formation in the interaction between Lycopersicon spp. and Oidium neolycopersici. Physiological and Molecular Plant Pathology, v.68, n.1-3, p.22-32, 2006. https://doi.org/10.1016/j.pmpp.2006.05.005.

Viecelli, C. A.; Stangarlin, J. R.; Kuhn, O. J.; Schwan-Estrada, K. R. F. Indução de resistência em feijoeiro por filtrado de cultura de Pycnoporus sanguineus contra Pseudocercospora griseola. Tropical Plant Pathology, v. 34, n. 2, p. 87-96, 2009. https://doi.org/10.1590/S1982-56762009000200003.

Viecelli, C. A.; Stangarlin, J. R.; Kuhn, O. J.; Schwan-Estrada, K. R. F. Indução de resistência em feijoeiro a mancha angular por extratos de micélio de Pycnoporus sanguineus. Summa Phytopathologica, v.36, n.1, p.73-80, 2010. https://doi.org/10.1590/S0100-54052010000100013.

Zaia, D. A. M.; Zaia, C. T. B. V.; Lichtig, J. Determinação de proteínas totais via espectrofotometria: vantagens e desvantagens dos métodos existentes. Química Nova, v. 21, n. 6, p. 787-793, 1998. https://doi.org/10.1590/S0100-40421998000600020.

Zavaleta-Mancera, H.A.; Lopez-Delgado, H.; Loza-Tavera, H.; Mora-Herrera, M.; Trevilla-Garcìa, C.; Vargas-Suárez, M.; Ougham, H. Cytokinin promotes catalase and ascorbate peroxidase activities and preserves the chloroplast integrity during dark-senescence. Journal of Plant Physiology, v. 164, n. 12, p. 1572-1582, 2007. https://doi.org/10.1016/j.jplph.2007.02.003.


Apontamentos

  • Não há apontamentos.


Direitos autorais 2019 Anna Claudia de Oliveira, Tainara Menegassi, Aline José Maia, Cacilda Márcia Duarte Rios Faria, Carla Garcia

SCImago Journal & Country Rank

Google Scholar

2020

h5 index: 11

h5 median: 12

Mais detalhes

“Este periódico é filiado à

Revista Brasileira de Ciências Agrárias (Agrária)

ISSN (ON LINE) 1981-0997

Pró-Reitoria de Pesquisa e Pós-Graduação

Universidade Federal Rural de Pernambuco

Rua Dom Manoel de Medeiros, s/n, Dois Irmãos Recife-Pernambuco-Brasil 52171-900

agrarias.prppg@ufrpe.br

secretaria@agraria.pro.br

 Licença Creative Commons
Todo o conteúdo da Agrária, exceto onde está identificado, está licenciado sob uma licença Creative Commons.